• 细胞数量：1*10^6
• 细胞冻存：液氮冻存（冻存液基础培养基+20%FBS+10%DMSO）
• 细胞运输：干冰运输（2ml冻存管）或活细胞运输（T25瓶）
• 冻存接收后处理：1.干冰运输，收到细胞后立即转入-80℃冰箱短暂中转或直接复苏；
  2.收到细胞后，若发现干冰已经完全挥发、冻存管瓶盖破裂脱落,请立即拍照后与我们联系。
  
• 细胞培养操作及注意事项：1、细胞传代：细胞密度达到80-90%时即可传代
  ①弃去培养上清，用PBS或生理盐水清洗1-2次；
  ②加入2ml0.25%胰酶（T25瓶），使胰酶覆盖整个瓶或皿，盖好放入培养箱消化；
  ③1-2min后，显微镜下观察细胞，若大部分细胞回缩且有少量细胞脱落，轻轻吹打下确认消化情况后加入完全培养基终止消化；若细胞还是贴壁，放回培养箱继续消化至可以轻轻吹打下为止；
  ④将细胞悬液1000RPM左右条件下离心4min，弃上清；
  ⑤用新鲜培养基重悬后加入培养瓶或皿中，T25培养瓶加6-8ml培养基；
  ⑥悬浮细胞直接离心收集，细胞沉淀重悬后分到新培养瓶中。
  2、细胞复苏：
  ①将冻存管在37℃温水中快速摇晃融化，时间1min左右，加入4-5ml培养基混匀。
  ②在1000RPM左右条件下离心4min，弃上清,加1-2ml培养基吹匀，将细胞悬液加入培养瓶中，补加适量培养基。
  3、细胞冻存：待细胞生长状态良好时进行细胞冻存保种
  ①弃去培养上清，用PBS或生理盐水清洗1-2次，加入1mL 0.25%胰蛋白酶（T25瓶）
  ②1-2min后，显微镜下观察细胞，大部分细胞回缩且有少量细胞脱落，轻轻吹打下确认消化情况后加入完全培养基终止消化；
  ③将细胞悬液1000RPM左右条件下离心4min，弃上清，加1ml冻存液重悬细胞；
  ④将冻存管放入程序降温盒，放入-80℃冰箱，4小时后将冻存管转入液氮罐储存。
  
• 复苏接收后处理：1.收到细胞后，请首先检查培养瓶是否破损或漏液，培养液是否混浊，如有漏液及培养液混浊情况请立即拍照把图片发给我们。
  2.75%酒精消毒瓶身后放培养箱中静置4-6h后，在显微镜下确认细胞状态并拍照100倍和200倍的照片，若有贴壁细胞脱落，可收集上清离心，将沉淀用新的培养基接种至新的培养瓶或培养皿中。
  3.建议收到当天不要消化处理，如果细胞长满90%，可选择传代处理。
  4.如您收到细胞3天内没有反馈相关问题，出现的细胞问题将不提供免费重发服务。